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關于PCRmax實時熒光定量檢測儀的技術原理,以下有詳細說明
更新時間:2021-05-19   點擊次數(shù):1115次
  PCRmax實時熒光定量檢測儀是為應對多元化、高復雜使用環(huán)境而開發(fā)的一款便攜式熒光定量PCR儀。本品采用了16單管聯(lián)管模式的小容量設計,及可對應電池供電功能等,以換取小巧便攜的特點。同時,采用定制版帕爾貼模塊、全新光路設計以及頂部掃描等。 

 

  技術原理:
  所謂PCR技術,是指在PCR反應體系中加入熒光基因,利用熒光信號累積實時監(jiān)測整個PCR進程,最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。在技術的發(fā)展過程中,兩個重要的發(fā)現(xiàn)起著關鍵的作用:1、在90年代早期,TaqDNA多聚酶的5′核酸外切酶活性的發(fā)現(xiàn),它能降解特異性熒光記探針,因此使得間接的檢測PCR產物成為可能;2、此后熒光雙標記探針的運用使在一密閉的反應管中能實時地監(jiān)測反應全過程。這兩個發(fā)現(xiàn)的結合以及相應的儀器和試劑的商品化發(fā)展導致PCR方法在研究工作中的運用。
 
  PCR反應過程中產生的DNA拷貝數(shù)是呈指數(shù)方式增加的,隨著反應循環(huán)數(shù)的增加,最終PCR反應不再以指數(shù)方式生成模板,從而進入平臺期。在傳統(tǒng)的PCR 中,常用凝膠電泳分離并用熒光染色來檢測PCR反應的最終擴增產物,因此用此終點法對PCR產物定量存在不可靠之處。在real-time Q-PCR中,對整個PCR反應擴增過程進行了實時的監(jiān)測和連續(xù)地分析擴增相關的熒光信號,隨著反應時間的進行,監(jiān)測到的熒光信號的變化可以繪制成一條曲 線。在PCR反應早期,產生熒光的水平不能與背景明顯地區(qū)別,而后熒光的產生進入指數(shù)期、線性期和最終的平臺期,因此可以在PCR反應處于指數(shù)期的某一點 上來檢測PCR產物的量,并且由此來推斷模板最初的含量。為了便于對所檢測樣本進行比較,在real-time Q-PCR反應的指數(shù)期,首先需設定一定熒光信號的域值,一般這個域值是以PCR反應的前15個循環(huán)的熒光信號作為熒光本底信號,熒光域值的缺省設置是3~15個循環(huán)的熒光信號的標準偏差的10倍。如果檢測到熒光信號超過域值被認為是真正的信號,它可用于定義 樣本的域值循環(huán)數(shù)(Ct)。Ct值的含義是:每個反應管內的熒光信號達到設定的域值時所經歷的循環(huán)數(shù)。研究表明,每個模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的 對數(shù)存在線性關系,起始拷貝數(shù)越多,Ct值越小。利用已知起始拷貝數(shù)的標準品可作出標準曲線,因此只要獲得未知樣品的Ct值,即可從標準曲線上計算出該樣 品的起始拷貝數(shù)。
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